小鼠造模后16小时取材,怎么计划时间

小鼠造模后16小时取材,怎么计划时间,第1张

小鼠造模方法。方法三次造模分别采用:免疫介导法:小鼠经60Gy60Coγ射线亚致死量全身

由尾静脉输入DBA/2小鼠的胸腺、淋巴结混合细胞悬液1×106个细胞/02ml/只。混合方法:小鼠一次全身30Gy60Coγ射线照射后,分照射后,

5、6天腹腔注射环磷酰胺500mg/kg及氯霉素625mg/kg。化学方法:用苯+玉米油,3次/w,别在第4、背部皮下注射,共注射15次。同时腹腔注射环磷酰胺溶液(50mg/kg),每日1次共7次。结果

免疫介导法造模后模型小鼠在15d内除1只小鼠外全部死亡;混合方法造模,模型小鼠骨髓

免疫介导和混合方法造模速度快,对模型小鼠骨髓抑制明显,与临床急性AA

活检提示造模失败;化学方法造模,造模成功,模型维持时间长。

一、实验目的: 通过实际操作,掌握小鼠的一般操作方法,包括小鼠的抓拿、标记、给药(灌胃、腹腔注射、皮下、肌肉、尾静脉注射)、取血(眶后静脉丛,摘眼球)、脊椎脱臼法处死、大体解剖。

二、实验动物: 昆明小鼠2只(1雌1雄)

三、实验步骤

1、抓取和固定,标记

2、去毛

3、给药:消化道、腹腔往射、尾静脉注射

4、取血:眼眶后静脉丛、尾静脉、眼球摘除法、断头法

5、麻醉:氯胺酮腹腔麻醉

6、处死:脊椎脱臼法

7、解剖:

雄性:睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺(在膀胱下方,胶质状,透明)

雌性:双角子宫、卵巢

肾上腺、胆囊、甲状腺、胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏、甲状腺

四、实验结果

1、抓取和固定标记:

抓取:抓小鼠的尾根部

固定:抓住小鼠的尾根部,让小鼠在粗糙平面上爬行,后拉尾跟部,右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤,小指和无名指将尾巴固定在手掌面。

2、灌胃法:左手抓取小鼠固定后,右手持特制灌胃针,沿一侧口角进针,紧贴咽后壁,头后仰以便伸直消化道,进针2/3后灌生理盐水05ml

3、注射给药:

腹腔注射:

从下腹部的两侧进针,进针时针与腹部成45°。进针后稍微晃动针,如无粘滞感则可注射药物。

尾静脉注射:一人固定小鼠,另一人用左手中指和拇指将尾拉直,食指托住尾部在尾动脉位置进针注射05ml生理盐水。注射完毕拔出针头,用无菌棉球压迫止血。

4、采血

从眼角内侧05cm处进针

眼球摘除法:左手抓取用固定小鼠,右手持弯头镊在眼球根部将眼球摘除,头朝下,眼眶内血迅速流出。

5、麻醉:

05%氯胺酮腹腔麻醉:本小鼠重22g,按100mg/kg的药量给药,2分钟麻醉成功

6、处死:

脊椎脱臼法:按住头部,将尾根部向后上方以短促的力量拉即可致死

7、解剖:

雄性:寻找到睾丸、附睾、输精管、鼠蹊腺

雌性:双角子宫、卵巢372肾上腺:米粒大小

胰腺:位于胃下方,类似于脂肪组织,浑浊状374, 胆囊:芝麻大小,浅绿色,半透明,甲状腺:紧贴环状软骨,另可解剖出胃、肝脏、脾、肺、肾、心脏。

五、实验讨论

1、小鼠抓取的感受:

小鼠性情较温顺,一般不会咬人,比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上,在小鼠向前挣扎爬行时,用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤,将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部,即可将小鼠完全固定。如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作,如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行。

2、小鼠尾静脉注射感受:

首先,注射前尾巴用稍热的水浸泡几分钟,有利于注射;其次,先远后尽,不要一开始就从尾根部,那样失败了不好办;再次,进血管后注意保持稳定,针尖很容易刺穿血管的。尾静脉就在尾巴的正左右两边,先用酒精用力擦,可以去掉部分角质,然后按住近心端让充血,就很容易看到了。进针大概1~2厘米是最合适的。

尾静脉注射时,可用45~50度的温水浸润半分钟或用酒精擦拭,可使血管扩张,同时也可软化表皮角质。以左手拇指和食指夹住鼠尾,使静脉充盈,中指帮助无名指和小指捏住鼠尾末梢,右手持注射器(连5号细针头),针头与静脉夹角一般小于30度,从距尾尖2 - 3厘米处进针,此处皮薄易进入,先抽回血,见到血后再缓慢注入少量药液,如无阻力,表示针头已进入静脉,可继续往入。一般推注速度为005 - 010m秒,一次注入量为005 - 025ml/10g体重。如反复注入,应尽可能从尾末端开始,以后向尾根部方向移动注射。

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这个问题问的,肯定是防止被咬啊,其实大鼠比小鼠温顺的多,别看他体积大,大鼠有两种保定方法,一种是三叉式的,右手大拇指食指,中指把大鼠卡住,但是不要卡的太紧,容易窒息,比较适合手小的女孩子,还有一种是最常用的抓颈背部皮毛,如果害怕就提着尾巴把他转几圈,然后迅速上手抓,但是一般只要你温柔点不要把他惹毛,他不会太暴躁,很好抓,先用手掌把他轻轻压住,然后手指一收就抓起来了,他也不叫很乖,小鼠一样的方法,

最重要的就是不要让动物受惊或者害怕,你可以抚摸它背部的皮毛,跟人一样嘛,谁要抓你,你肯定挣扎,你对他好,他就让你抓,让你灌胃。

 小鼠的饲养管理非常繁琐,要求饲养人员具有高度的责任心,随时检查小鼠状况,出现问题立即加以纠正。下面是我精心为你整理的小鼠的饲养方法,一起来看看。

小鼠的饲养方法

 1 饲喂

 小鼠胃容量小,随时采食,是多餐习性的动物。成年鼠采食量一般为3~7克/天,幼鼠一般为1~3克/天。应每周添料3~4次,在鼠笼的料斗内应经常有足够量的新鲜干燥饲料,在小鼠大群饲养中,每周应固定两天添加饲料,其它时间可根据情况随时注意添加。

 根据小鼠不同阶段的生长发育特点,应有不同的给饲标准。由于种鼠群和生产鼠群交配繁殖频繁,尤其生产种母鼠的负担重,能量消耗大,因此除供给足够的块料外,还要定时饲喂少量葵花籽、麦芽和拌有鸡蛋的软料。葵花籽供应量为05~1克/天/只成年鼠。而麦牙和软料由于微生物条件较难控制,目前趋于淘汰不用,而致力于颗粒料的全价营养,即用维生素合剂代替。

 2 给水

 用饮水瓶给水,每周换水2~3次,成年鼠饮水量一般为4~7ml/天,要保证饮水的连续不断,应常检查瓶塞,防止瓶塞漏水造成动物溺死或饮水管堵塞使小鼠脱水死亡。小鼠在吸水过程中,口内食物颗粒和唾液可倒流入水瓶。为避免微生物污染水瓶,换水时应清洗水瓶和吸水管。严禁未经消毒的水瓶继续使用。

 3 清洁卫生和消毒

 每周应至少更换两次垫料。换垫料时将饲养盒一起移去,在专门的房间倒垫料,可以防止室内的灰尘和污染。一级以上动物的垫料在使用前应经高压消毒灭菌。

 要保持饲养室内外整洁,门窗、墙壁、地面等无尘土。

 坚持每月小消毒和每季度大消毒一次的制度。即每月用01 %新洁尔灭喷雾空气消毒一次,室外用3%来苏尔消毒,每季度用过氧乙酸(02%)喷雾消毒鼠舍一次。笼具、食具至少每月彻底消毒一次,鼠舍内其它用具也应随用随消毒。可高压消毒或用02 %过氧乙酸浸泡。

 应有周转用房,在饲养室使用一年时,将小鼠全部移入,原饲养室彻底整修消毒。

 4 动物健康的外观检查

 这是检查动物健康状况的一项常规工作。外观判断小鼠健康的标准是:

 ①食欲旺盛;

 ②眼睛有神,反应敏捷;

 ③体毛光滑,肌肉丰满,活动有力;

 ④身无伤痕,尾不弯曲,天然孔腔无分泌物,无畸形;⑤粪便黑色呈麦粒状。

 5 性别鉴别

 成年鼠性别很易区分,雄鼠的阴囊明显;雌鼠可见阴道开口和五对乳头。

 幼鼠或仔鼠则主要从外生殖器与肛门的距离判定,近者为雌,远者为雄。另外,雌鼠肛门和生殖器之间有一无毛小沟,而雄鼠则在肛门和生殖器之间长毛。再者,雌鼠有比雄鼠明显很多的乳头。

小鼠的饲养管理技术

 (一)小鼠饲养管理的基本条件

 饲养小鼠的基本条件包括鼠舍及笼具设备。由于前述小鼠的生物学特性及习性,小鼠对房舍的建筑和环境条件的要求比较严格,鼠舍应满足基本要求,如温度、湿度、噪音、氨浓度、通风换气和气流等条件。

 笼具可采用瓦罐、塑料罐或塑料盒,按照体重20 g的小鼠计算,每只小鼠需要饲养笼具面积0009~0063 m2,最好是分为5~10只小笼饲养。非同窝的性成熟雄鼠放在一起时,易互斗并咬伤,所以已配过种的雄鼠应单独饲养。笼具上配以合适的上盖,上盖用金属网,网孔大小以逃不出仔鼠为原则。笼具上应配备饮水器具,以玻璃瓶或塑料瓶配以瓶塞组成,瓶塞中间打孔插入铝管或两端烧钝的玻璃管作为饮水管,饮水管的内径5~6毫米,外径7~8毫米。笼具内用清洁、干燥的小刨花或锯末作为垫料。笼具应摆放在鼠架上,以节约鼠舍空间。

 (二)小鼠的饲料

 小鼠的饲料,要求必须保持营养物质的平衡稳定,富含蛋白质,否则会影响生长发育、生产繁殖(如产仔数下降、不愿喂奶、嚼食仔鼠等)和抵抗疾病的能力(尤其在断奶时仔鼠死亡率高)。

 小鼠对维生素、矿物质的要求也比较高,长期缺乏这些营养物质时,仔鼠生长缓慢,并出现死亡。另外,小鼠的饲料不宜经常更换,如果饲料不稳定,易引起小鼠生长停滞、繁殖率下降等情况发生。

 小鼠饲料采用块料,一般是按照配方制作成块料后烘干。我们根据当地的饲料来源,常用的小鼠饲料基础配方为:白面40 %,玉米面25 %,麸皮20 %,豆粉15 %。混合后另加:鱼粉4 %,鸡蛋1 %,酵母粉1 %,骨粉3 %,食盐1 %,鱼肝油1 %。充分混合,加温水拌匀,压实切块,晒干烘干。烘烤的温度不宜超过80 ℃,时间不能太长,否则容易破坏维生素等营养成分。制作小鼠饲料的原料及成品饲料要包装严密,防止污染,放置在干燥、凉爽的环境中。饲料不宜久放,因存放时间过久,营养物质损失过多,则不能满足小鼠的生理需要。对清洁级小鼠,所用饲料应经过灭菌。

 (三)小鼠的饲养管理

 小鼠采食以夜间为主,应在每天下午加满料块及饮水,并于次日早上检查,补充缺料笼具的料块,不一定每笼必加。

 管理要求如下:

 温度:18~22 ℃,每日观察温度,必要时调整温度。

 相对湿度:50~60%,每日用干湿球温度计估计湿度,必要时采取措施调整湿度。

 噪音:60分贝以下

 照明:10~14小时,每日8:00开灯,18:00~20:00关灯。

 氨气:20 ppm以下

 换气:8~20次/小时

 气流:10~25厘米/分

 笼具:一般每周换一次小鼠笼具内的垫料,每月对笼具洗涤、消毒一次。

 饮水瓶:供应清洁无污染的饮水。每3天洗一次饮水瓶,并注意添加新鲜洁净的饮水。每月煮沸消毒一次。

 饲养室:室内每月用01%新洁尔灭喷雾消毒;每季度用过氧乙酸熏蒸消毒。严禁非本室工作人员随意进入。每日观察温度、并用干湿球温度计估计湿度,必要时调整温度,或采取措施调整湿度。

 (四)小鼠的性别鉴定和抓取与保定方法

 雌鼠可见明显的阴道开口和五对乳头,肛门与外生殖器距离较近;雄鼠可见明显的阴囊,肛门与外生殖器距离较远。

 保定小鼠时,用右手从笼盒中将小鼠尾部抓住并提起,放在笼盖(或表面粗糙的物体)上,轻轻向后拉鼠尾,在小鼠向前挣脱时,用左手的拇指和食指抓住两耳和颈部皮肤,无名指、小指和手掌心夹住背部皮肤和尾部,中指固定其前肢,并调整好小鼠在手中的姿势。抓取小鼠的整个动作要快,切不可粗暴,否则可能把小鼠捏伤。

 

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